Determinación de la fibronectina plasmática para la predicción temprana de sepsis en pacientes quemados
DOI:
https://doi.org/10.54495/Rev.Cientifica.v5i1.454Palabras clave:
determinación, la fibronectina plasmática, la predicción temprana de sepsis, pacientes quemadosResumen
El presente estudio se llevó a cabo en 26 pacientes quemados, divididos en tres grupos: Grupo Séptico (I), Grupo Moderadamente Séptico (II) y Grupo No Séptico (III), así como un grupo control, con el propósito de comparar las concentraciones de fibronectina durante el curso de la quemadura con superficie corporal quemada, desarrollo de sepsis y microorganismos presentes en las heridas.
El estudio reveló que no existe una correlación significativa entre la superficie corporal quemada y la concentración de fibronectina.
Sin embargo, se encontró diferencia significativa entre la concentración de fibronectina de los pacientes quemados y el grupo control.
El grupo de pacientes sépticos presenta lo valores más bajos de fibronectina con respecto a a media de grupo control, siendo el período más probable de desarrollo ciesepsis los días comprendidos entre el tercero y el décimotercero, período que coincide con las depresiones más severas de fibronectina para este grupo.
Se determinó una relación inversa entre las concentraciones de fibronectina y los conteos microbianos en las heridas de los pacientes sépticos, lo cual fue contrario a lo presentado por los grupos de pacientes moderadamente y no sépticos, en lo que las concentraciones de fibronectina se mantienen altas sobre la media del grupo control y los conteos microbianos variables.
El grupo de pacientes sépticos presentó el mayor conteo de microorganismos en las heridas, significativamente diferente al de los otros grupos.
Las pruebas estadísticas empleadas para determinar las diferencias entre los grupos en los distintos días fueron: análisis de varianza multifactorial modelo desbalanceado completamente al azar, seguido de la prueba de Turkey.
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Shorr RM, Ershler WB, Gamelli RL. Inmunolglobulin production in burned patients. J Trauma 1984; 24:319-322. https://doi.org/10.1097/00005373-198404000-00006
Deitch AE, Gelder F, McDonald J. Pronostic significance of abnormal neutrophil chemotaxis after thermal injury J Trauma 1982; 22:199-204. https://doi.org/10.1097/00005373-198203000-00005
Ekindjian OG et al. Plasma fibronectin time course in burned patients Influence of sepsis. J Trauma 1984-24: 214-219. https://doi.org/10.1097/00005373-198403000-00005
Miller CL. The immune response to burn injury. J Trauma 1981; 21:677-679. https://doi.org/10.1097/00005373-198108001-00011
Menon T et al. Kinetics of peripheal blood T cell numbers and functions in patients with burns. J Trauma 1984; 24:220-223. https://doi.org/10.1097/00005373-198403000-00006
Mosseson MW, Amrani L. The estructure and biologic ativities of plasma fibronectin. Blood 1980; 56:145-158. https://doi.org/10.1182/blood.V56.2.145.145
Bjornson AB, Altemeir WA, Bjornson S. A model studyng the role of complement and inmunoglobulins in opsonization of oportunist microorganisms (The septic burned patients). Am Surg, 1983;189:515-527.
Saba et al. Reversal of fibronectin and opsonic deficiencis in patients. A controlled estudy. Ann Surg -1984; 199:8-96. https://doi.org/10.1097/00000658-198401000-00015
Georgiade et al. A comparison of methods for the quantitation of bacteria in burn wounds. II Clinical evaluation. Am J Clin Path 1970; 53:40-42. https://doi.org/10.1093/ajcp/53.1.40
Georgiade J et al. A comparison of methods for the quantitation of bacteria in burn wounds. I Experimental ebaluation. Am J Clin Path 1970;53:35-39. https://doi.org/10.1093/ajcp/53.1.35
Loebl EC et al. The method of quantitative burn wound biopsy cultures and its routine use in the care of burned patients. Am J Path 1974; 61:21-24. https://doi.org/10.1093/ajcp/61.1.20
Pruitt BA, McManus AT. Opportuniste infections in severely burned patients. Am J Med 1984; 146-154. https://doi.org/10.1016/0002-9343(84)90334-6
Saba TM, Jafe E. Plasma fibronectin (opsonic glycoprotein) its synthesis by vascular endothelial cell and rol cardiopulmnary integrity after trauma as relation to Retículo Endothelial System function. Am J Med 1980; 68: 577-592. https://doi.org/10.1016/0002-9343(80)90310-1
Mosher FD. Phisiology of fibronectin. Ann Rev Med 1984; 35: 561-575. https://doi.org/10.1146/annurev.me.35.020184.003021
Lanser ME, Saba TM, Soovill WA. Opsonic glycoprotein (plasma fibronectin) levels after burn injury. Ann Surg 1980; 192:76-782. https://doi.org/10.1097/00000658-198012000-00014
Detich EA, Gels, F. MacDonald JC. The role of plasma fibronectin a nonantibody, noncomplement opsonin for Staphylococcua aureus J. Trauma 1984; 24: 203-213. https://doi.org/10.1097/00005373-198403000-00004
Stanislawski L et al. Role of tibronectin in attachment of Streptococcus pyogenes and Eschecichia coli to human cell lines and isolated oral epithelial cells. Infect Imm 1985;48:257-259. https://doi.org/10.1128/iai.48.1.257-259.1985
Speziale et al. Fibronectin binding to a Streptococcus pyogenes strain. J Bacteriol 1984; 157:420-427. https://doi.org/10.1128/jb.157.2.420-427.1984
Ouassi MA et al. Fibronectin receptors on Trypanosoma cruzy trypomastigotes and their biological function. Nature 1984; 308:380-381. https://doi.org/10.1038/308380a0
Zearluth G, Wolf G. Plasma fibronectin as a marker for cáncer and other diseases. Am J Med 1984;77:685-689. https://doi.org/10.1016/0002-9343(84)90366-8
Velley TS. Plasma fibronectin response to sepsis mobilization or synthesis? J Trauma 1984; 24:824-829. https://doi.org/10.1097/00005373-198409000-00008
Alexander WJ. Infections of burn wounds. 335-353p. (In Bennet JV, Brachman PS, eds. Hospital Infection. Boston: Little Brown, 1979. 542 p).
Brodin B et al. Low plasma fibronectin indicate septicaemia in mayor burns. Act Chir Scand 1984; 150:5-11.
Woods et al. Role of fibronectin in the prevention of adherence of Pseudomonas aeruginosa to buccal cells. J Infect Dis 1981; 143:784-790. https://doi.org/10.1093/infdis/143.6.784
Woods et al. Role of salivary protease activity in adherence of Gram negative bacilli to mammalian buccal epithelial cells "in vivo". J Clin Invest 1981; 68: 1435-1440. https://doi.org/10.1172/JCI110395
Procter Ra. Role of fibronectin in human monocyte and macrophage bacterial activity. Infect Imm 1985; 47:629-637. https://doi.org/10.1128/iai.47.3.629-637.1985
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